Grupo: 2-2 Turno: Matutino Fecha de Salida: 30 de Octubre del 2013




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títuloGrupo: 2-2 Turno: Matutino Fecha de Salida: 30 de Octubre del 2013
fecha de publicación05.01.2016
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Itinerario y actividad de trabajo en la salida de Estudio-Campo:

Asignatura: Algas, liquenes y briofitas.

Grupo: 2-2 Turno: Matutino Fecha de Salida: 30 de Octubre del 2013.

Fecha de llegada: 1 de Noviembre

Responsable: M. en C. José Luis Beltrán Magallanes.

Material Biologico a colectar: Algas , liquenes y Briofitas en sus distintos ambientes.

Material biologico fotografiado (fototeca): Tomar fotos y registrar en tu libreta el numero de la foto con datos de campo, que deberas preguntar a tu maestro. Coordenadas, altura (GPS). El estudiante debera poner atenciòn a los nombres de cada localidad (sitios) durante el trayecto y kilometro susbsecuente.

NOTA: Etiquetar todo el material Biologico, como lo indique el maestro.

Toma de muestas: Debera incluir forma de habita, forma de vida (libre, secil, epifito, litofitico, corticula, bentonico etc ).

a).- Aguas Epicontinentales: rios, arrollos, drenes de caminos sercanos a la carretera de Culiacan-Mazatlan.

b).- Aguas Marinas: Localidades : Playa Celestino Gasca, Barras de Piaxtla, Zona intermareal (Mezeta de Cacastla), Zonas de playa Mazatlan.

I.- Para la toma de muestras de algas epicontinentales y marinas:

Grafica de mareas del día 1 de Noviembre del 2013.

Los muestreos en aguas costeras (marinas) deberan tomarse en los tiempos que demuestra la grafica de mareas, por debajo de 2 pies, por lo tanto antes de esta practica deberan tomarse las muestras de aguas epicontinentales (rios, arrollos, charcas, drenes, canales, sobre troncos de arboles humedos y mojados, rocas humedas, en raices de las hojas) aprovechando el recorrido de la salida de campo, debemos llegar a Celestino Gasca a las 10:00 AM. (Ver grafia de mareas), ver mareas bajas, tiempo ideal para hacer los muestreos libres.
Grafica de Mareas del dia 1 de Noviembre del 2013.


LEVANTAMIENTO DE MUESTRAS DE ALGAS, LIQUENES Y BRIOFITAS EPICONTINENTALES

Lugares: Rio San Lorenzo (Puente), Meseta de Cacaxtla (laguna de marismas o duna), Rio Concordia.

Se tomaran muestras de macroalgas (parches de manchas y zurrapas) y micro algas (aguas). Se colocaran en hielera previamente, etiquetadas, descritas en la libreta de pasta dura (registro de no. de colectas).

Los líquenes y briofitas se deberán Guardar en bolsas de plástico, retirando restos de suelo, materia orgánica con la ayuda de un pincel grueso seco, esto para el caso de talos carnosos, gelatinosos, muy húmedos, para talos secos, escamosos con poca humedad Guardarse en bolsas de papel grandes. Todo el material etiquetado y descritos en la libreta de registros de no. de colectas.

Líquenes: clave para determinar la morfología de los líquenes:



-Practica de ecología de macroliquenes y briofitas: preguntar al maestro de la Metodología que se Utilizara. Lugar Palmito, Concordia. Diferentes comunidades. (Se deberán hacer levantamiento de cada una de las especies de líquenes y briofitas en esta práctica y anotar que es material colectado para la práctica correspondiente.

LEVANTAMIENTO DE MUESTRAS DE MACROALGAS EPICONTINENTALES:

Lugares: Celestino Gasca, localidades de playa en Mazatlan.

Llegada a Celestino Gasca 10:00 am, las prácticas que se aplicaran son colecta de Macroalgas marinas, se harán recorridos por toda la estructura de la playa, deberán anotar en el FORMATO DE LEVANTAMIENTO DE MUESTRAS, la zona de playa donde encontraron la muestra (por cada muestra indicarlo).

Las muestran se deberán colocar previamente en hilera previamente, guardadas en bolsa ziploc, etiquetadas, descritos los datos de campo en la etiqueta y libreta de pasta dura (no. de colectas), después de concluir el levantamiento de muestras, se procederá a revisar el material colectado y pasar a procesar el material, midiendo los talos en fresco con un vernier, altura del talo, ancho, grosor (diámetro de tricomas, estipete, foliolos y frondas). Des pues de esto, procesarlas para su deshidratación lenta con papel.

NOTA: la deshidratación lenta con papel, preguntar al maestro su procedimiento.

Estructura de la playa:

si utilizamos las olas como punto de referencia podemos dividir la playa en varias zonas:

  • La franja donde rompe la ola se conoce como de zona rompiente.

  • La banda donde la ola sube y baja, de pendiente inclinada se conoce como la zona de barrida.

  • El punto más alto de la zona de barrida se conoce como la berma, formando una cresta en la zona mas alta.

  •  Arriba de la berma esta la parte plana de la playa que se conoce como la terraza.

  • Durante el invierno o durante un mal tiempo con marejadas más fuertes de lo normal se puede observar acumulación de algas y materiales transportados por el mar. Esta franja se conoce como la zona de arribazones.

Por otro lado si utilizamos la zona que está delimitada por la marea, se utilizan otros términos para clasificar las zonas de la playa:

  • La Zona Litoral se conoce como zona entre los niveles de marea alta y marea baja.

  • La Zona Sublitoral es la que esta siempre sumergida por la marea.

  • La Zona Supralitoral es la que se encuentra sobre el litoral y esta siempre expuesta.



Estructura general de la zona de playa.

Formato de colecta: Levantamiento de Muestras:

Datos que deberán llevar las muestras de algas, líquenes y briofitas, colectadas en el campo.

No. de Muestra_______ Fecha____________

Reino: ________________________división_________________________

Localidad:________________________________________________________________

Coordenada Geográfica______________________________

Habito:____________________________(postrado, erecto, heterótrico, rastrero, bentónico, epifito)

Forma de Vida:_____________________________________

pH del agua o sustrato_____________________________

Color:________________________________

Especies asociadas:_________________________________________________

Clima.___________________________________________________________

Observaciones del ejemplar:__________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________

Practicas a cumplir:

1.- Colecta de macroalgas (Chlorophyta,Rodophyta y Phaeophyta), Morfología, citología, formas de vida y Habito.

2.- Preparado de Macroalgas para la colección científica de herbario, identificación de la división, Familia y Género, mediante técnicas colorimétricas.

3.- Colecta de líquenes, Morfología, citología, y formas de vida y habito de los líquenes.

4.- Preparado de Líquenes para la colección científica de herbario, identificación de la clase y Géneros.

5.- colecta de Briofitas, morfología, citología, forma de vida y habito.

6.- Preparado de Briofitas para la colección científica de herbario, identificación de la división, Familia y Género.

7.- Manejo de base de datos de taxonomía. (Centro de computo).

8.- Interacción de las algas, líquenes y briofitas con su medio ambiente.

Materiales para la colecta de Macroalgas: Por Equipo.

1.- Bolsas Ziploc, de 1 Kg, 500 gr y 250 gr, 20 Piezas por cada uno.

2.- Vernier o pie de Rey, de 25 cm. 1 Pieza por equipo.

3.- Papel secante ( de cocina de hojas gruesas y adsorbentes), cantidad 5 rollos.

4.- Papel encerado cantidad 5 rollos.

5.- Cartulina Bristol 50 hojas cortarlas (28 x 40 cm), de acuerdo a los estándares y normar de herbarios Internacionales para la colección científica de Macroalgas.

6.- Frascos de muestras para aguas de mar y aguas epicontinentales 10 frascos.

7.- Plumón indeleble negro punto mediano. 1 Pieza.

8.- Lupa.

9.- Navaja de filo delgado.

10. Cámara fotográfica.

11.- fotocopiar 50 piezas del formato de colecta.

Material por Grupo:

12.- GPS (Profesor llevara uno, pero si consiguen uno mas mejor)

13.- Prensa botánica de madera (ya está en el laboratorio de botánica)

14.- Una Cuerda de 3 Metros de Celulosa comprar en ferretería)

15.- solución de KI: ver metodología para la práctica de identificación de Chlorophyta, Rodophyta y Phaeophyta, Preparar un Gotero de 25 ml, como lo indica la metodología de la práctica.

16- solución de HCl al 15 % .

Material individual:

-Copias de claves taxonómicas.

-Cuaderno y lápiz de campo de 50 hojas.

-cuaderno de pasta dura (para registro de numero de colectas de 100 hojas.)

-Ropa adecuada para campo, pantalón de mezclilla, camisa de manga larga colores claros, gorra, zapato para caminar sobre terreno rocoso, bolsa para dormir

-ropa para andar en la playa colectando. (llevarla puesta porque también andaremos en los ríos).
Preparado de Macroalgas para la colección científica de herbario

Introducción

Un herbario es una especie de biblioteca vegetal destinada al estudio. Los hay en muchas escuelas y universidades de México. Un herbario de algas o ficoteca, como se llama a veces, es una colección de algas secas, procesadas para que se conserven en su forma de la manera más parecida al estado viviente. Una vez arregladas las algas, se clasifican y se guardan en estantes para protegerlas del polvo y de los animales que puedan destruirlas.

Las macroalgas o algas marinas se encuentran entre los miembros más primitivos del reino vegetal. Sus orígenes se remontan al principio de la evolución de los vegetales a partir de varios grupos ancestrales independientes, su relación filogenética alguna, cuyos procesos evolutivos fueron paralelos y se dieron como resultado de respuestas a condiciones semejantes del medio. Son organismos pluricelulares constituidos por células indiferenciadas, de estructura generalmente constituida de talo, fijas al litoral o a los fondos rocosos, que representan una gran variedad morfológica y cuyos tamaños van desde unos cuantos centímetros hasta más de sesenta metros de longitud. Se distinguen de las plantas terrestres por que no poseen sistema vascular, flores ni raíces (solo estructuras de fijación al sustrato, que no sirven para absorber nutrientes), y porque no pueden vivir fuera del agua.

Las macroalgas se clasifican en tres grupos, con base principalmente en su pigmentación. Las algas verdes (Chlorophyta), algas pardas (Phaeophyta) y algas rojas (Rodophyta). Los dos últimos grupos son exclusivamente marinos, mientras que el primer grupo se encuentra diversificado en ambientes continentales y marinos.

Objetivos

Al final de la práctica, el alumno:

  • Entenderá la importancia de las macroalgas.

  • Aprenderá a conocer el trabajo dentro del herbario de ficología.

  • Conocerá las técnicas adecuadas para fijar y montar el material ficologico.

  • Aprenderá la importancia y función de los herbarios botánicos y ficológicos.

  • Conocerá los problemas de mantenimiento y preservación de los grupos algales.

  • Identificara y clasificara las tres divisiones de macroalgas

Metodología

Tomar una plántula del alga marina completa de la base hasta el ápice. Lavarla con agua corriente para especies de agua dulce y para especies marinas con agua de mar, hasta que no haya partículas de arena u otro material orgánico o inorgánico. Luego montarlas sobre el papel auxiliándose de la humedad del material. Introducirla en una charola con agua (dulce o de mar cual sea su procedencia) y moverla con un pincel delgado y pequeño, de tal forma de acomodarla de la mejor manera dejando libres sus estructuras reproductoras, así como también el resto de sus células. Sacar el alga de la charola, esperar a que escurra y poner a orear. Luego prensar las muestras en la prensa ficologica (no muy prensadas). Colocando Primero Papel arrugado o periódico, luego papel secante doble, posteriormente la cartulina brístol con el ejemplar que se va a fijar, colorar papel encerado, luego papel secante, colocando en el centro y cubriendo toda el área del ejemplar a fijar, luego colocar papel secante, y papel corrugado, repetir en este orden para cada ejemplar, tal como lo indica el anexo. El tamaño de cartulina brístol y del papel secante y cartón corrugado es de 28 X 40 cm (Germán, 1986).

Los ejemplares se etiquetan por la parte inferior derecha y se anota la información siguiente (Germán, 1986):
Nombre científico (Género, especie y autor)

Sitio de recolección con algunas referencias geográficas pertinentes

Hábitat y características de la planta

Nombre del colector y fecha de recolección.
Identificación Taxonómica:

La identificación y clasificación a nivel Género y especie, se basa en la estructura histológica del talo y en las formas de reproducción, por lo que no puede hacerse solamente observación macroscópica. Es necesario recurrir a cortes histológicos del talo vegetativo y de las estructuras reproductoras, los cuales por lo general se hacen en fresco o por micrótomo por congelación.

Clave sencilla para identificar Macroalgas:
Reactivo: Solución Yodo-Yodura, Pesar 0.3 g de I2 y 1.5 g de KI disolver ambos reactivos en 100 ml de agua destilada.
1.- sustancia de reserva en forma de almidón reacciona positivamente al Yodo………2

1.- Sustancia de reserva diferente al almidón; reacciona negativamente al Yodo.

Coloración del alga desde el verde Olivo al moreno o pardo…………….Phaeophyta

2.- Reacciona al Yodo en color azul verdoso. Coloración del alga desde

el rojo o rosado a purpura…………………………………………………Rhodophyta

2.- Reacciona al Yodo en color azul intenso. Coloración del alga verde

Pasto……………………………………………………………………….Chlorophyta
Para la identificación taxonómica en el nivel de clases, familias, géneros y especies se recomienda consultar a Taylor (1960 y 1962); Abbott y Dawson (1978); Wynne (1986; Hiscock (1986); Littler et al. (1989); ortega et al. (1993) y Cavaliere (1994).
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Robledop, D. 1990. Las microalgas marinas, un recurso desconocido. Revista ICYT, Vol. 12 Num. 169. México, D.F.

Identificación morfológica y clasificación de Líquenes
Introducción
Un liquen es una asociación de un hongo y un alga, en la cual los dos organismos están entre mezclados formando un solo talo. El componente fúngico del liquen se denomina micobionte o micosimbionte y el componente algal se denomina Ficobionte o ficosimbionte (Alexopoulos et al ., 1985). Esta asociación es bastante particular; en la generalidad de los casos, los hongos que constituyen o dan origen a los líquenes no pueden vivir aislados en la naturaleza; además, una especie determinada de hongos se asocia casi siempre a una especie también determinada de alga (Adrias, 1935). Parece ser que el hongo parásita a las células algales y puede vivir también, en forma saprofítica a expensas de las células algales que mueren a consecuencia del parasitismo o de otras causas (Alexopoulos et al .,1985). En los líquenes, se pueden distinguir tres partes: a) un talo, es decir la porción asimilativa de los líquenes; b) apotecios o fruto; c) espermogonios, o sea el aparato reproductor macho (Adrias, 1935). El talo de un liquen está formado en su mayor parte por hifas fúngicas entrecruzadas mientras que las algas se encuentran a menudo limitadas a una capa sub-superficial y representan aproximadamente sólo un 7% del peso seco del liquen, por lo que el hongo es llamado macrobionte por constituir la mayor parte del talo y el alga se le llama microbionte debido a que su presencia es escasa, pero importante para la fotosíntesis. Existen dos tipos generales de talos liquénicos, de acuerdo con la distribución de las células algales en el tejido fúngico: talo homómero en el cual las algas están más o menos uniformemente distribuidas por todo el talo y talo heterómero en el cual las células algales forman una capa diferenciada dentro del talo. La inmensa mayoría de los líquenes conocidos son del segundo tipo, y presentan un talo

estratificado (Alexopoulos et al ., 1985).
Durante mucho tiempo, los especialistas en botánica pensaron que los líquenes eran plantas independientes, parecidas a otros miembros del reino vegetal. Sólo hace poco más de un siglo fue explicada satisfactoriamente la naturaleza del talo del liquen. Actualmente, se piensa que el talo del liquen representa una simbiosis mutualística, de la que se benefician ambos organismos. Las pruebas que apoyan esta opinión proceden del descubrimiento de que

cuando los dos componentes del talo del liquen son cultivados por separado en cultivos axénicos y luego se reúnen de nuevo, sólo se produce la liquenización en medios en los que cada uno de los componentes por separado no podrían vivir. En los medios que favorecen el crecimiento de uno de los componentes o de ambos, por separado, no tiene lugar la liquenización (Alexopoulos et al ., 1985).
Basándose en el aspecto, la estratificación y las estructuras de fijación al sustrato, los líquenes son tradicionalmente denominados: gelatinosos, crustáceos, foliosos, y fruticosos, estos últimos pueden separarse en arbustivos o colgantes, o bien, subdividirse en acordonados o acintados, según se observe la forma del corte transversal redonda o elíptica. El crecimiento de los líquenes es extremadamente lento, muchos de ellos crecen de 1 mm a 1 cm por año. Por lo tanto, los talos grandes son probablemente muy viejos (Alexopoulos et al ., 1985).

Debido a que los dos organismos que componen a un liquen pertenecen a distintas divisiones Cianófitos, Clorófitos y Eumicotes, los líquenes generalmente no se clasifican como una división aparte sino que se agrupan con los hongos. Esto probablemente deriva del hecho de que en la mayoría de líquenes, la morfología del hongo parece determinar totalmente la morfología del liquen. Existe un sistema de clasificación que otorga importancia básica a la estructura y el desarrollo de los ascocarpos y de los ascos y, de forma secundaria, también los caracteres morfológicos y químicos del talo del liquen. Este sistema tiende a poner juntos a los hongos liquenizados que tengas los ascocarpos parecidos, pero todavía está en una fase de cambios continuos. Los llamados ácidos liquénicos, nombre que designa diversos compuestos orgánicos sintetizados por los líquenes, son cada vez más útiles para la identificación y clasificación de los líquenes (Alexopoulos et al ., 1985). Los tres grandes grupos de líquenes son: Ascolíquenes, que se dividen en tres grandes grupos, basados en la estructura de sus ascos y de sus ascocarpos: los Himenoascolíquenes con ascos unitunicados en apotecios; los Loculoascolíquenes con ascos bitunicados en apotecios; y los Loculoascolíquenes con ascos bitunicados en pseudotecios. Los Basidiolíquenes han sido situados en los órdenes de las Afiloforales y de las Agaricales. Los Deuterolíquenes son básicamente estériles que no producen esporas. Se clasifican según la estructura y composición química de su talo (Alexopoulos et al ., 1985).

Los líquenes son consorcios biológicos de amplia difusión, que se encuentran en una gran variedad de hábitats, desde la región Ártica hasta la región Antártica, y en todas las regiones existentes entre ambas. Se encuentran sobre las rocas de los desiertos, sobre capas de lava solidificada, en regiones polares, sobre la corteza de los arboles, sobre las hojas de las plantas, sobre todo en los trópicos, y en cualquier hábitat concebible (Alexopoulos et al ., 1985). El

sustrato que ocupan los líquenes se puede dividir en cortícolas, los que crecen sobre las cortezas de arboles; saxícolas, sobre rocas; y humícolas, sobre el mantillo del bosque (González et al ., 1976).
En cuanto a su importancia, los líquenes saxícolas intervienen probablemente en las primeras etapas de la formación del suelo. Los líquenes cianoficófilos (los que poseen algas verde-azules como ficobiontes) son importantes en ciertos ecosistemas, en los que, seguramente aportan la mayor parte del nitrógeno fijado. Algunas especies constituyen un importante alimento invernal para los renos y los caribúes, aunque el valor nutritivo de los líquenes es

bastante bajo. Varios productos comerciales como tintes, tornasol y aceites esenciales para la fabricación de perfumes se sacaban al principio de los líquenes pero han sido sustituidos en buena parte por compuestos sintéticos. El ácido úsnico, producido por numerosos líquenes, es una sustancia antibacteriana y fue utilizada en la preparación de ungüentos, pero aun no ha encontrado lugar en la medicina como antibiótico importante. Es sabido que los líquenes

resultan valiosos indicadores geológicos y biológicos de diferentes tipos de grados de contaminación ambiental ya que no secretan lo que absorben y cuando alcanzan un nivel tóxico el liquen muere. Así mismo se reconoce su capacidad para acumular metales radiactivos (Alexopoulos et al ., 1985). El conocimiento de los líquenes por el hombre es muy antiguo y se remonta hasta la prehistoria. Estos organismos fueron utilizados en la realización de algunas pinturas rupestres con base en raspados de líquenes sobre superficies de rocas por los indios de Canadá. Se han utilizado diferentes nombres para reconocer a los líquenes: lichen, yerba, etc.. En la actualidad liquen significa empeine (salpullido). A partir del siglo XVIII se inicio un fuerte avance en la definición, continuándose hasta el siglo XIX, en este mismo siglo comenzó una nueva época en la historia de la liquenologia, con el importante trabajo del liquenólogo y discípulo de Linneo, Erik Acharius, quien inicio una nueva especialidad dentro de las ramas de la Biología, es decir, la liquenologia, por lo que se le considera el padre de la liquenologia (Godinez, 1989). Posteriormente es complicado indicar cuando se inicio el conocimiento liquenológico en México, esta muy disperso y es de difícil acceso. Ya en el siglo XIX son bien conocidos los líquenes, tanto los estudios como por la gente, esto es lo que ha contribuido a la difusión del conocimiento a nivel popular de la liquenologia en México. En las posteriores décadas, el Dr. Henry A. Imshaud de la Universidad de Michigan en Estados Unidos, publico en 1956 su catalogo de líquenes de México, dicho trabajo constituye la primera compilación de la flora liquenácea de México (Godinez, 1989). Otros estudios importantes en México, son los que se llevaron a cabo por González y Guzmán en los años 70, en los que estudiaron diferentes especies de líquenes a lo largo de la República Mexicana, registrando nuevas especies en la micoflora mexicana y describiéndolas detalladamente (González et al ., 1976). Es interesante señalar que a partir de 1973, las Universidades de Guerrero, Nuevo Leon, Puebla, la Facultad de Ciencias (U.N.A.M.), y la Escuela de Nacional de Ciencias Biológicas (I.P.N.), han realizado estudios sobre líquenes, lo que significa que la liquenologia esta tomando un segundo impulso (Godinez, 1989).
Objetivo

El estudiante aprenderá a Identificar y clasificar los líquenes

MÉTODOLOGIA
Material de Campo. Los materiales necesarios para efectuar recolecciones de ejemplares liquénicos resulta reducido y poco costoso. Una libreta o cuaderno de notas donde se anoten en orden progresivo los números de recolección de cada ejemplar. La numeración debe estar acompañada de los datos necesarios respecto al sitio de la colecta, como: situación geográfica, altitud, tipo de vegetación, tipo de suelo, sustrato, fecha, y datos complementarios como: nombre vulgar, usos, etc., además de algunos específicos sobre el sustrato como nombre vulgar o científico del árbol o arbusto, tipo de roca, etc. No se recomienda el uso de bolsas de polietileno o plástico para especies con talo tipo fructiculoso debido a que favorece la descomposición rápida del material y cambios en su coloración. Bolsitas de papel de aproximadamente 15×17 cm que sirvieron para guardar cada ejemplar por separado, sobre la bolsa se anotó el número de recolección que le correspondió. El cuchillo de monte es indispensable para desprender cuidadosamente el material del sustrato. El cincel y el martillo se utilizaron para separar lajas pequeñas de roca donde se encontraba el espécimen. Se colocaba el cincel en forma inclinada en los sitios más rugosos de la piedra y se golpeaba ahí, esto facilitaba la operación.

La Colecta dependiendo de las características del lugar y de la cantidad de líquenes que se observen, se determina el numero de organismos a colectar para ser llevados al laboratorio para su identificación. La colecta de ejemplares liquénicos se puede realizar durante cualquier época del año, pero se requiere observar cuidadosamente el espécimen antes de removerlo del sustrato, procurando atender las siguientes consideraciones: 1) Estimar cuantitativamente la población liquenica para evitar depredar la zona. Recolecte el material necesario. 2) Apreciar que el tamaño del ejemplar sea el adecuado para su estudio, teniendo en cuenta la cantidad de material liquénico que será aprovechado para la identificación taxonómica y luego desechado. 3) Analizar el aspecto y coloración del talo, ya que suelen ser indicadores de la vitalidad del ejemplar. Evite recolectar material deteriorado. 4) Seleccionar ejemplares aislados y desechar los que aparecen entremezclados con otros líquenes o musgos, evitando así confusiones que obstaculicen su estudio. 5) Evaluar la posibilidad de removerlo sin causarle daño, ya sea trasladando o no parte del sustrato. Los líquenes con forma de roseta deben ser recolectados íntegramente. 6) Determinar con una lupa si el ejemplar presenta las estructuras maduras necesarias para su determinación taxonómica. 7) En caso de encontrar un ejemplar valioso desecado y por lo tanto frágil, se recomienda humedecerlo para evitar su daño durante el proceso de remoción. 8) Estimar la conveniencia de fotografiar el ejemplar (Lot et al ., 1986). La conservación del material liquénico ya herborizado se conservo en sobres hechos con papel especial para herbarios, que resulta más durable, pero puede sustituirse por hojas de papel bond tamaño oficio (Lot et al ., 1986). Los ejemplares que se encuentran adheridos a la roca, se conservan en cajas de cartón. Para la Identificación el proceso de determinación de ejemplares liquénicos, se requiere manejar claves taxonómicas y destreza manual para mantener el talo bajo el microscopio estereoscópico (2.5×), hacer cortes transversales delicados auxiliándose de navaja en pinzas de punta fina y agujas de disección. Se colocaban los cortes en un portaobjetos, se les añade una gota de agua y se coloca el cubreobjetos. La preparación obtenida sirve para verificar al microscopio óptico (10× y 40×) la estratificación del talo y determinar el tipo de alga. Eventualmente habría que determinar características particulares de las esporas, ascas o parafisos, hacer un squash y observarlo a inmersión (100×), se realizaba en un microscopio calibrado para medir las estructuras. Con frecuencia las claves requieren un diagnostico aproximado del tipo de sustancias liquénicas que dan una coloración especifica con algunos reactivos químicos (Lot et al ., 1986). La química no es un carácter de importancia en la mayoría de las plantas, pero en los líquenes, es un medio práctico y útil para identificar especies. Los líquenes producen sustancias químicas únicas, la mayoría son fenoles débiles o ácidos grasos, que son depositados en la superficie de las hifas. Cada liquen posee un arreglo químico constante, así que las mismas especies brindaran el mismo resultado, sin importar donde se colectan. Esto significa que se pueden identificar líquenes mas acertadamente revisando su composición química. Sobre todo, especies que son fácilmente confundidas sin un estudio cuidadoso, son rápidamente separadas simplemente al añadirles una gota de KOH en la medula de los especímenes desconocidos. Sin embargo, algunas especies que son idénticas en apariencia, poseen composición química diferente. Estas “especies químicas”, que pueden ser separadas solo por una prueba química, son mencionadas en las claves correspondientes (Hale, 1969). Para la clasificación de los líquenes se van a utilizar las claves de Hale (1974), Kornerup y Wanscher (1978), y Ryan et al . (1996).
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SAYLER, G., y LAYTON, A. 1990. Environmental Application of Nucleic Acid Hybridization. Annual Review ofMicrobiology. 44, 625-648.

Identificación y Clasificación de Briophyta

Introducción

México es un país que posee una gran riqueza florística, pero su conocimiento está incompleto, sobre todo en lo referente a las criptógamas. Debido a la destrucción rápida de los recursos vegetales, este conocimiento es urgente e indispensable.
Con respecto a las briofitas, se calcula que en nuestro país existen alrededor de 949 especies y variedades de musgos (Delgadillo, com. pers.), 550 taxa de hepáticas foliosas (Fulford & Sharp 1990) y un número indeterminado de especies de hepáticas taloides. Sin embargo, muchas regiones y estados de la República todavía carecen de registros briológicos adecuados y necesita recolectarse en ellos. Por ello, es urgente preparar profesionales en briofitas que efectúen los estudios briológicos básicos en el país. El primer contacto formal de los estudiantes mexicanos con las briofitas ocurre a nivel de la licenciatura; es entonces cuando se les puede motivar para que estudien estas plantas. Sin embargo, en las universidades del país existen una serie de problemas que lo impiden.
Indudablemente, se debe recurrir a las obras de Schofield (1985), Richardson (1981) y Watson (1971), por ejemplo, las de Clarke y Duckett (1979) y de Schuster (1983-1984), o las revisiones de “Advances in Bryology” (Schultze-Motel 1984); con estas obras la enseñanza de la briología en México debe facilitarse.

Objetivo

El alumno Identificara las tres clases principales de Briophyta y utilizar las claves para su identificación a nivel Genero y especie.

Anexo. Para la Identificación Utilizar el manual de Briofitas (Delgadillo 1990)

Metodología.

Cada muestra debe desprenderse con la navaja o cuchillo cuando la planta este fuertemente adherida al substrato, con frecuencia basta con tomarla con la mano para retirarla del lugar donde crece. Cuando sea posible debe tomarse un amuestra generosa. Pero cuidando de no eliminar por completo la población; si se deja un fragmento este puede acelerar la regeneración. La muestra se coloca en un sobre de recolección o bolsa de papel numerado en el que se anotan datos del substrato, iluminación y la humedad. No se recomienda papel delgado o lustroso porque las muestras húmedas lo reblandecen; también son indeseables las bolsas de plástico o Polietileno, porque no permiten el secado de los ejemplares y no son biodegradables.

Los ejemplares pueden carecer de esporofitos o otras estructuras útiles para la identificación. Dependiendo de la Naturaleza de la Investigación, el colector no debe desechar muestras estériles o sin esporofito ya que muchas de ellas son susceptibles de identificación aun en estado vegetativo.

Las rocas, el suelo y los arboles o arbustos son substratos comunes, pero el recolector debe asumir que cada uno de ellos no presentan condiciones uniformes. La comunidad briofitas de las partes altas de cantos puede ser diferente a la de la parte de la base de la misma roca, las briofitas que habitan en las ramas puede ser distinta a la corteza del mismo árbol, esto debido a que las que habitan en la corteza de arboles requieren de mayor humedad y menor luz que la de las ramas. Una situación similar puede esperarse en diferentes especies de árboles o en una cañada, en una ladera con respecto a un arroyo, etc. Todos estos ambientes deben explorarse antes de acudir a otra localidad.

Los ejemplares de musgos pueden recibir un tratamiento ligero, al aire o en secadora. Las Hepáticas taloides y los antoceros se prensan suavemente como las plantas vasculares, manteniendo los sobres entre cartón corrugado y secante, cambiando el papel secante periódicamente.

Bibliografia.
Clarke, C.G.S. & A.J. Duckett (Eds.). 1979. Bryophyte Systematics. Academic Press. London. 582 pp.
Delgadillo M., C. & A. Cárdenas S. 1990. Manual de Briofitas. 2a. ed. Inst. Biología, UNAM. México, D.F.
Fulford, M. & A.J. Sharp. 1990. The leafy Hepaticae of Mexico: One hundred and twenty-seven years after C.M. Gottsche.

Mem. New York Bot. Gard. 63: 1-86.
Richardson, D.H.S. 1981. The biology of mosses. Blackwell Sci. Publ. Oxford.
Schofield, W.B. 1985. Introduction to Bryology. Macmillan Publ. Co. New York.
Schultze-Motel, W. (Ed.). 1984. Advances in Bryology. J. Cramer. Vaduz. Vol. 2.
Schuster, R.M. (Ed.). 1983-1984. New manual of Bryology. Hattori Bot. Lab. Nichinan. 2 Vols.
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